فایل ورد کامل پژوهش علمی درباره سنجش میزان ATP در اسپرم مولدین نر ماهی کفال طلایی (Mugil auratus) با رویکرد زیست‌شناسی سلولی

توجه : به همراه فایل word این محصول فایل پاورپوینت (PowerPoint) و اسلاید های آن به صورت هدیه ارائه خواهد شد

 فایل ورد کامل پژوهش علمی درباره سنجش میزان ATP در اسپرم مولدین نر ماهی کفال طلایی (Mugil auratus) با رویکرد زیست‌شناسی سلولی دارای ۸۸ صفحه می باشد و دارای تنظیمات در microsoft word می باشد و آماده پرینت یا چاپ است

فایل ورد فایل ورد کامل پژوهش علمی درباره سنجش میزان ATP در اسپرم مولدین نر ماهی کفال طلایی (Mugil auratus) با رویکرد زیست‌شناسی سلولی  کاملا فرمت بندی و تنظیم شده در استاندارد دانشگاه  و مراکز دولتی می باشد.

این پروژه توسط مرکز فایل ورد کامل پژوهش علمی درباره سنجش میزان ATP در اسپرم مولدین نر ماهی کفال طلایی (Mugil auratus) با رویکرد زیست‌شناسی سلولی۲ ارائه میگردد

توجه : در صورت  مشاهده  بهم ریختگی احتمالی در متون زیر ،دلیل ان کپی کردن این مطالب از داخل فایل ورد می باشد و در فایل اصلی فایل ورد کامل پژوهش علمی درباره سنجش میزان ATP در اسپرم مولدین نر ماهی کفال طلایی (Mugil auratus) با رویکرد زیست‌شناسی سلولی،به هیچ وجه بهم ریختگی وجود ندارد

---

بخشی از متن فایل ورد کامل پژوهش علمی درباره سنجش میزان ATP در اسپرم مولدین نر ماهی کفال طلایی (Mugil auratus) با رویکرد زیست‌شناسی سلولی :

فایل ورد کامل پژوهش علمی درباره سنجش میزان ATP در اسپرم مولدین نر ماهی کفال طلایی (Mugil auratus) با رویکرد زیست‌شناسی سلولی

چکیده

کفال ماهیان دریای خزر یکی از مهمترین ماهیان شیلاتی این دریا می باشند.که پس از انتقال از دریای سیاه به دریای خزر، توانستند خود را بااکوسیستم این دریا مطاقبت دهند.

هدف از این تحقیق بررسی میزان ATP اسپرم ماهی کفال طلایی در شرایط زمانی،دمایی و محلولهای تداوم بخش (Extender) مختلف بوده است. بدین منظور میزان ATP اسپرمهای تازه نمونه گیری شده در دماهای مختلف (°C12- 10،۲۰ -۱۸)، میزان ATPاسپرمهای نگهداری شده دردماهای مختلف (°C 4،Room temperature ) به مدت ۶ ساعت، میزان ATP اسپرمهای نگهداری شده در محلولهای تداوم بخش (extender)مختلف (گلیسرول، محلول نمک ۷/۰% ، محلول نمک ۶۵/۰%) به مدت ۵ روز، میزان ATP اسپرمهای نگهداری شده در همان شرایط به مدت ۱۰ روز، به روش فوق حساس بیولومینوسانس اندازه گیری گردید.

براساس آزمایشات انجام شده در این تحقیق، غلظت ATP اسپرمهای تازه نمونه گیری شده در دمای °C 12- 10، ۲۲/۷ ± 04/74درصد غلظت ATP اسپرمهای تازه نمونه گیری شده در دمای °C20- 18 بود.اسپرمهای نگهداری شده در دمای °C 4 یخچال به مدت ۶ ساعت و اسپرمهای نگهداری شده در دمای آزمایشگاه به مدت ۶ ساعت به ترتیب ۹۱/۰ ± 26/90 درصد و ۴۹/۱ ± 17/17 درصد ATP خود را حفظ کردند. نگهداری اسپرم درextender های مختلف (گلیسرول، محلول نمک ۷/۰% ، محلول نمک ۶۵/۰%) به مدت ۵ روز نشان داد که گلیسرول و محلول نمک ۶۵/۰%، درصد بالاتری از ATP را نسبت به محلول نمک ۷/۰% حفظ کردند. نگهداری اسپرم درهمان extender‌ها به مدت ۱۰ روز نشان داد که گلیسرول درصد بالاتری از ATP را نسبت به محلول نمک ۷/۰% و ۶۵/۰% حفظ کرد. اسپرمهای نگهداری شده در گلیسرول در دمای °C 15- بعد از ۵ روز و اسپرمهای نگهداری شده در گلیسرول در دمای °C 15- بعد از ۱۰ روز به ترتیب ۵/۴ ± 19/74 و ۲/۶ ± 67/47 درصد ATP خود را حفظ کردند. اسپرمهای نگهداری شده در محلول نمک ۷/۰% در دمای °C 1 بعد از ۵ روز و اسپرمهای نگهداری شده در محلول نمک ۷/۰% در دمای °C 1 بعد از ۱۰ روز به ترتیب ۸۱/۲ ± 65/13 و ۰۶/۰ ± 69/0 درصد ATP خود را حفظ کردند. اسپرمهای نگهداری شده در محلول نمک ۶۵/۰% در دمای °C15- بعد از ۵ روز و اسپرمهای نگهداری شده درمحلول نمک ۶۵/۰% در دمای °C 15 – بعد از ۱۰ روز به ترتیب ۶۸/۶ ± 58/73 و ۱۲/۰ ±05/1 درصد ATP خود را حفظ کردند.

براساس نتایج به دست آمده برای حفظ میزان ATP اسپرم ماهی کفال طلایی، نمونه گیری در دمای °C20- 18 و نگهداری در گلیسرول توصیه می شود.

مقدمه

اسپرم عامل مهم تولیدمثل، بقاء و تداوم نسل است. بررسی اسپرم از نظر پارامترهایی مانند توانایی تلقیح، تحرک، درصد اسپرمهای متحرک، سرعت حرکت، فرکانس ضربه تاژکی، میزانATP و فاکتورهای شیمیایی و بیوشیمیایی، در تشخیص کیفیت اسپرم و کنترل روند تولیدمثلی برخی جانداران از جمله آبزیان کمک می کند. هدف از این تحقیق بررسی میزان ATP اسپرم ماهی کفال طلایی در شرایط دمایی ، زمانی و محلولهای تداوم بخش مختلف می باشد. تاکنون تحقیقات گسترده ای توسط پژوهشگران مختلف روی این سلول صورت گرفته است. با این حال مطالعات انجام شده در ارتباط با میزان ATP اسپرم ماهیان نسبتأ محدود است. این امر تفسیر علت ناموفق بودن پروژه پرورشی کردن برخی ماهیان را دشوار می کند. در این رابطه باید مطالعات بیشتری در زمینه بررسی میزان ATP اسپرم ماهیان صورت پذیرد.

اسپرم به کمک حرکت ضربه ای تاژک خود شنا می کند. انرژی مورد نیاز برای این حرکت ازطریق هیدرولیز ATP فراهم می شود(Billard et al, 1999 ).تحرک اسپرم به میزان ATPذخیره ای اولیه (Christen et al, 1987) و میزان ATP سنتز شده در طول فاز تحرک (Lahnsteiner et al, 1999 ) وابسته است. در اکثر ماهیانی که دارای لقاح خارجی هستند، ATP سنتتاز قادر به نگهداری نسبتهای بالای ATP هیدرولیز شده مورد نیاز در طول حرکت نیست، لذا میزان ATPبه سرعت کاهش می‌یابد. این کاهش ATP به موازات کاهش تعداد ضربات تاژکی و سرعت حرکت اسپرم است (Christen et al, 1987 و Perchec et al, 1995). تفاوت قابل توجهی بین گونه‌ها در مقدارATP مورد نیاز برای تامین حرکت اسپرم وجود دارد(Mansour et al, 2003 ).

در این مطالعه میزان ATP اسپرم ماهی کفال طلایی در شرایط مختلف دمایی نمونه گیری (۱۰-۱۲و ۱۸-۲۰ درجه سانتیگراد) و نگهداری ۶ ساعته در دماهای مختلف ( دمای اتاق و ۴ درجه سانتی گراد) در محلولهای تداوم بخش مختلف( گلیسرول، محلولهای نمکی ۶۵/۰ و ۷/۰ درصد) در زمانهای متفاوت ( ۵ روز و ۱۰ روز) به کمک روش فوق حساس بیولومینوسانس مورد اندازه گیری قرار خواهد گرفت.

– ۱ پیشینه تحقیق

امروزه کشورهای پیشرفته به دلیل تلاش بیشتر و برخورداری از امکانات پیشرفته تر، در زمینه ویژگیهای اسپرم ماهیان و عوامل موثر بر آن تجارب زیادی کسب نموده اند. اطلاعات بدست آمده عمدتأ در مورد ماهیان پرورشی می با شد. دراین مورد کارهای تحقیقاتی زیادی انجام شده است و مطالعات گسترده ایی در خصوص عوامل تاثیرگذار، استرس زا و یا آلوده کننده صورت گرفته نتایج حاصله با یکدیگر مقایسه شده اند. به مواردی از این پژوهشها در ذیل اشاره شده است.

ماهیان آبشش آبی نر به دو شیوه تولید مثل می کنند. برخی از نرها که parental نام دارند تولیدمثلشان تا سن ۷ سالگی به تاخیر می افتد، اما گروه دیگر (sneaker) زودتر بالغ میشوند. طبق مطالعات Burness و همکارانش در سال ۲۰۰۴ در هر دو شیوه تولیدمثلی، سرعت حرکت اسپرم و سطوح ATP در ۶۰ ثانیه اول تحرک اسپرم به موازات هم کاهش می یابد. اگرچه میزان ATP اولیه اسپرم ماهیان sneakerنسبت به ماهیان parental بیشتر است ولی بین شیوه های تولید مثلی آنها تفاوتی وجود ندارد. ضمنأ از لحاظ سرعت حرکت اسپرم، درصد اسپرمهای متحرک یا فعالیت آنزیمهای متابولیک بین شیوه های تولیدمثلی تفاوتی وجود ندارد. هرچند اسپرم ماهیان parental تا حدودی نسبت بالاتری از کراتین فسفوکیناز را نسبت به سیترات سنتاز دارا می باشند. در هر دو شیوه با افزایش فعالیت کراتین فسفوکیناز و سیترات سنتاز، میزان ATPاسپرم افزایش (Burness et al, 2004) می یابد.

طبق گزارشات Kruger و همکارانش در سال ۱۹۸۳ میانگین مدت زمان تحرک اسپرم کپورماهی معمولی Cyprinus carpio به فصل وابستگی داشته و حدودا ۲/۱ تا ۶/۱ دقیقه است Kruger et al , 1983)). ماکزیمم مدت زمان تحرک اسپرم کپورماهی معمولی ۲ دقیقه است ۱۹۸۴) ، .( Koldras and Moczarsk

در کپورماهی، اسپرم و ادرار از یک مجرای تناسلی آزاد می شوند لذا ممکن است اسپرم جمع آوری شده از آن توسط ادرار آلوده شود. طبق مطالعات Perchec و همکارانش در سال ۱۹۹۸ درصورت آلوده نشدن اسپرم ماهی به ادرار، میزان ATP اسپرم حدود nmol 9 – 8 به ازاء ۱۰^۸ اسپرم و سرعت ابتدایی آن حدود s/ mm 160 – 100 و فرکانس ضربه تاژکی حدود ۵۰ – ۳۰ اندازه گیری شد. اما، وقتی که مایع اسپرمی با ۵/۷% ادرار به مدت ۱ ساعت آلوده شد، میزان ATP،nmol 5 – 4 به ازاء ۱۰^۸ اسپرم بود و اغلب اسپرمها سرعت ابتدایی کمی معادل s/ 100 – 30 و فرکانس ضربه تاژکی حدود ۳۰ – 10 داشتند. این مسئله نشان می دهد که اسمولالیته پایین ادرارعامل کاهش کیفیت اسپرم کپورماهی است .(Poupard et al, 1998)

Zilli و همکارانش در سال ۲۰۰۴ نشان دادند که یک رابطه خطی بین ظرفیت تلقیح اسپرم و پارامترهای اسپرمی از جمله میزان ATPو فعالیت آمینوترانسفراز وجود دارد Zilli et al, 2004) ). طبق گزارشات Jezierska و Witeska در سال ۱۹۹۹ اسپرمهای کپور معمولی مدت زمان s 80 – 70، فعال می مانند و تحرکشان بعد از ۲۴ ساعت کاهش می یابد، در حالی که اسپرمهای کپورعلفخوار s 55 – 30 فعال می مانند و تحرکشان پس از ۸ ساعت کاهش می یابد. اسپرمهای کپورمعمولی پس از ۲۴ ساعت حدود s10 متحرک می مانند. مدت زمان تحرک اسپرم متاثر از دمایی است که در آن نگهداری می‌شود. حتی نگهداری کوتاه مدت اسپرم (۱۵ دقیقه) در دمای ۲۰°C، موجب کاهش مدت زمان تحرک اسپرم در هر دو گونه ماهی می شود. بطوریکه پس از ۲ ساعت نگهداری اسپرم کپورماهی معمولی در دمای ۲۰°C ، تحرک اسپرم حدود ۵۰% کاهش می یابد ( ۱۹۹۹، Jezierska and Witeska).

اسپرمهای نگهداری شده در دمای صفر تا °C 5 قادر به تلقیح تخم هستند. بهرحال چگونگی نگهداری اسپرمها، روی مدت زمان تحرک اسپرم اثر می گذارد Goodal et al, 1989)). در دماهای پایین تر، مدت زمان تحرک اسپرم طولانی تر است (۱۹۹۶،Babiak،Glogowski). نگهداری اسپرم به مدت ۵ ساعت در یخچال (°C 5) روی نسبت تلقیح اسپرم اثر قابل توجهی ندارد. اسپرم کپورماهی معمولی بدون کاهش قابل توجه زمان تحرکش ، حدود ۲۴ ساعت و اسپرم کپور علفخوار حدود ۸ ساعت می تواند در یخچال(°C 5) نگهداری شود (Sarnowski et al, 1997 ).

در بررسی انجام شده بین پنج حفاظت کننده انجمادی (cryoprotectant) یعنی DMSO ،DMA، گلیسرول، گلیکول پروپیلن و متانول،DMA بهترین حفاظت را برای اسپرم گربه ماهی اروپایی (Silurus glanis) فراهم می کند (, ۱۹۹۹ (Ogier et al. گلیسرول با غلظت ۱۰% در مقایسه با DMSO یا گلیکول اتیلن به عنوان بهترین cryoprotectantبرای اسپرم گربه ماهی اروپایی شناخته شده است. اسپرم منجمد شده توسط گلیسرول ۱۰% ، ۳۶ درصد تحرک داشت ولی اسپرم منجمد شده توسط دو نگهدارنده دیگر هیچ تحرکی نداشت (۱۹۹۳, Linhart et al). در این بررسی محیط منجمد مورد استفاده، یک محلول شور فاقد شکر با زرده تخم مرغ بود. زیرا کارایی کم گلیسرول در محافظت اسپرم ، به شکل رقابت بین شکر و گلیسرول برای واکنش با فسفولیپیدهای غشاء تفسیر شده است (Anchorodogug et al, 1987). متانول دارای اثر محافظت کننده برای اسپرم گربه ماهی اروپایی است. معمولأ متانول برای ماهیان آب شیرین مناطق حاره ای مثل ماهی گورخری Brachydanino rerio ((Harvey et al,1982 و چندین نمونه تیلاپیا Oreochromis spp استفاده می شودChao et al,1987)) و (Rana et al,1989).

شکل ۱-۵ ساختمان آنزیم ATP سنتاز

ATP سنتتاز (F_۱F_۰ ATPase) تقریبأ سه بیلیون سال قدمت دارد و در غشاء میتوکندری، کلروپلاست و باکتریها وجود دارد. ساختمان و عملکرد آن در گونه های مختلف بطور شگفت انگیزی یکسان است. آنزیم ATP سنتتاز با انتقال پروتون از طریق قسمت هیدروفوب F_۰ موجب سنتز مولکول حامل انرژی ATP ازADP و فسفات غیرآلی در کلاهک هیدروفیل و محلول F_۱ می شود. مجموعه چند زیرواحدی، شامل یک محدوده کروی، F_۱ (با ترکیب a_{۳b 3g 3e} ) و یک محدوده غشایی داخلی، F_۰(با ترکیب a b_۲ c_۱۲) به دو دم باریک متصل می شود. دم مرکزی بوسیله زیرواحد e و بخشی از زیرواحد g شکل گرفته است درحالیکه دم محیطی از بخشهای هیدروفیلی دو زیرواحد b بخش F_۰ و زیرواحدd بخش F_۱ تشکیل شده است. مسیر پروتون با زیرواحدهای a و c در F_۰ و بخشهای اتصالی کاتالیزوری که عمدتأ در زیرواحدهای b بخش F_۱ درحد فاصل b – a شکل گرفته است. مطالعات ساختاری، بیوشیمیایی، طیف نمایی و میکروسکوپی اخیر نشان می دهند که تغییرات ساختمانی ناشی از چرخش زیرواحد e – g در بخش ثابت زیرواحدهای a_۳b3 درATP سنتتاز ،این آنزیم را به عنوان کوچکترین ماشین مولکولی برای انسان شناخته است.

چرخش ایجاد شده در بخش F_۰ به دم مرکزی متصل به مرکز بخش چرخندهc منتقل می شود. از آنجایی که زیرواحد c دارای ۱۲ – 9 نسخه است، چرخش ایجاد شده در بخشهای ۱۲ – 9 را بصورت عددی نشان می دهند. بهرحال تقارن سه جانبه F_۱ نشان می دهد که این عدد باید ۹ یا ۱۲ باشد. آنالیز ترمودینامیکی نامتعادل سنتز ATP موید ۱۲ بودن این عدد می باشد. برای سنتز یک مولکول ATP باید ۴ پروتون جابجا شده، بخش چرخنده c در ۱۲ بخش مجزا چرخیده و ۱۲ پروتون باید به ۳ هیدروکسی بوتیرات و ۸ پروتون به سوکسینات فرستاده شود.

بنابراین طبق مکانیزم مورد نظر، انتهای دم مرکزی در ۱۲ بخش ۳۰ درجه مجزا می چرخد. ساختمان کریستالی F_۱ و آزمایشات میکروسکوپی اپی فلوئورسانس نشان می دهند که زیرواحد g در سه بخش مجزا ۱۲۰ درجه می چرخد. تمایز آشکاری بین ابتدا و انتهای دم قابل تشخیص است به این صورت که دم می تواند در انتها آزادانه بچرخد ولی ابتدای دم مهار شده است. این محدودیت در حقیقت ناشی از عکس العمل بین دم و بخشهای کاتالیزوری است. انتهای دم نسبت به ابتدای دم می چرخد. این چرخش منجر به تولید فشاری می شود که با زاویه چرخش و ذخیره انرژی چرخشی در دم متناسب است. بنابراین انرژی ناپایدار پروتون بصورت انرژی چرخشی در زیرواحد g ذخیره می شود. این انرژی چرخشی بیشتر به منظور تغییرات ساختمانی در قسمتهای کاتالیزوری مصرف و منجر به سنتز ATP می شود.

آزمایشات اخیر فلوئورسانس تریپتوفان senior نشان داد که در طول سنتز ATP ، آنزیمی وجود دارد که هر سه زیرواحد b آن حاوی نوکلئوتید اتصالی است. برعکس، ساختمان کریستالی گروه Walker فقط در دو زیرواحد b دارای نوکلئوتید اتصالی است. در ساختمان کریستالی، زیرواحدb فاقد نوکلئوتید اتصالی از دو زیر واحدb دیگر مجزا ولی مشابه با آنهاست. درساختمان کریستالی، یکی از قسمتها به AMP – PNP مشابه به ATP ، متصل شده و b_TP نامیده می شود، قسمت دیگر ساختمان کریستالی به ADP متصل شده و b_DP نامیده می شود، درحالیکه b فاقد نوکلئوتید اتصالی b_E نامیده می شود. Mg ADP به b_E متصل می شود ولی درصورت عدم حضور جایگاه اتصال، نمی تواند به آن متصل شود. همزمان با جابجایی پروتون درF_۰، انتهای زیرواحد g شروع به چرخیدن می کند و موجب واکنش بین زیرواحد e و ۳۸۱- GLU مربوط به b_E شده و در نهایت موجب اتصال Mg ADP به b_E می شود. در این فاصله زمانی ابتدای دم بیحرکت می ماند در نتیجه جایگاههای ترکیبات b_TP و b_DPبدون تغییر می مانند. با چرخش بیشتر انتهای دم، مهارشدگی ابتدای دم برطرف شده و سرتاسر دم شروع به چرخیدن می کند دراین حالت زیرواحد e با۳۸۱-GLU مربوط به b_DP واکنش داده و منجر به آزادسازی Mg ATP می شود(۲۰۰۵،et al Nath ).

فایل ورد کامل پژوهش علمی درباره سنجش میزان ATP در اسپرم مولدین نر ماهی کفال طلایی (Mugil auratus) با رویکرد زیست‌شناسی سلولی
فهرست مطالب

عنوان صفحه

چکیده————————————————————-۲-۱

مقدمه—————————————————————۳

فصل اول : مروری بر تحقیقات گذشته

۱-۱ پیشینه تحقیق—————————————————- ۸-۵

۱-۲ تاکسونومی—————————————————– ۹-۸

۱-۳ مشخصات کلی راسته کفال ماهی شکلان ———————————–۹

۱-۴ مشخصات خانواده کفال ماهیان —————————————-۱۰

۱-۵ مشخصات کفال طلایی ——————————————-۱۲-۱۰

۱-۶ زیست شناسی کفال طلایی —————————————–۱۳-۱۲

۱-۶-۱ مشخصات زیستی کفال طلایی —————————————۱۳

۱-۶-۱-۱ تحمل درجه حرارت ——————————————–۱۳

۱-۶-۱-۲ تحمل شوری ————————————————-۱۳

۱-۶-۱-۳ تحمل مقادیر اکسیژن ——————————————–۱۳

۱-۶-۱-۴ تغذیه کفال طلایی ——————————————-۱۴-۱۳

۱-۷ ارزش اقتصادی کفال ماهیان —————————————-۱۵-۱۴

۱-۸ ارزش غذایی ماهی کفال ——————————————— ۱۶

۱-۹ پراکنش کفال ماهیان ———————————————۱۸-۱۶

۱-۱۰ دریای خزر————————————————– ۲۲-۱۸

۱-۱۱ تولید مثل کفال طلایی ——————————————-۲۳-۲۲

۱-۱۱-۱ دستگاه تولید مثل کفال طلایی ————————————۲۵-۲۳

۱-۱۱-۲ اسپرماتوژنز —————————————————۲۵

۱-۱۱-۳ ساختمان اسپرماتوزوئید ——————————————- ۲۶

۱-۱۱-۴ فعالیت اسپرماتوزوئید ——————————————– ۲۷

۱-۱۱-۵ رابطه بین میزان ATP و تحرک اسپرم ——————————— ۲۸

۱-۱۱-۶ مکانیزم چرخشی انتقال انرژی در ATP سنتاز ————————- ۳۱-۲۸

۱-۱۱-۷ AMP حلقوی بعنوان یک پیامبر ثانویه —————————— ۳۷-۳۲

۱-۱۱-۸ extenders ———————————————– 40-37

فصل دوم: روش تحقیق و مواد

۲-۱ مواد و وسایل مورد نیاز ——————————————- ۴۳-۴۲

۲-۱-۱ خصوصیات کیت تعیین ATP ————————————— 43

۲-۱-۲ اجزای کیت تعیین ATP —————————————— 43

۲-۱-۳ روش آماده سازی محلولها ——————————————۴۴

۲-۱-۴ خصوصیات و کاربردهای بافر HEPES —————————– 45-44

۲-۱-۵ روش آماده سازی محلول بافر HEPES——————————— 45

۲-۱-۶ روش آماده سازی محلول بی کربنات سدیم——————————- ۴۶

۲-۱-۷ روش آماده سازی محلول گلیسرول ۱۰% و گلوکزM 3/0 ——————— 46

۲-۲ روش کار —————————————————- ۵۰-۴۶

فصل سوم : نتایج تحقیق

نتایج ———————————————————- ۶۲-۵۲

فصل چهارم: بحث و نتیجه گیری و پیشنهادات

بحث و نتیجه گیری ————————————————- ۶۹-۶۴

پیشنهادات ———————————————————- ۷۰

منابع فارسی ———————————————————۷۱

منابع لاتین——————————————————- ۷۶-۷۲

فایل ورد کامل پژوهش علمی درباره سنجش میزان ATP در اسپرم مولدین نر ماهی کفال طلایی (Mugil auratus) با رویکرد زیست‌شناسی سلولی
فهرست جداول

عنوان صفحه

جدول ۱-۱ ——————————————————– ۳۳

جدول ۳-۱——————————————————— ۵۳

جدول ۳-۲——————————————————— ۵۳

جدول ۳-۳——————————————————— ۵۳

جدول ۳-۴——————————————————— ۵۳

جدول ۳-۵——————————————————— ۵۴

جدول ۳-۶——————————————————— ۵۴

جدول ۳-۷——————————————————— ۵۴

جدول ۳-۸——————————————————— ۵۵

جدول ۳-۹——————————————————— ۵۵

جدول ۳-۱۰——————————————————- ۵۵

جدول ۳-۱۱——————————————————- ۵۵

فایل ورد کامل پژوهش علمی درباره سنجش میزان ATP در اسپرم مولدین نر ماهی کفال طلایی (Mugil auratus) با رویکرد زیست‌شناسی سلولی
فهرست نمودارها

عنوان صفحه

نمودار۱———————————————————— ۵۶

نمودار ۲———————————————————– ۵۷

نمودار ۳———————————————————– ۵۸

نمودار ۴———————————————————– ۵۹

نمودار ۵———————————————————– ۶۰

نمودار ۶ ———————————————————- ۶۱

نمودار ۷———————————————————– ۶۲

فایل ورد کامل پژوهش علمی درباره سنجش میزان ATP در اسپرم مولدین نر ماهی کفال طلایی (Mugil auratus) با رویکرد زیست‌شناسی سلولی
فهرست اشکال

عنوان صفحه

شکل ۱-۱ ——————————————————— ۱۰

شکل ۱-۲———————————————————- ۱۱

شکل ۱-۳———————————————————- ۱۷

شکل ۱-۴———————————————————- ۲۶

شکل ۱-۵———————————————————- ۲۹

شکل ۱-۶———————————————————- ۳۵

شکل ۱-۷———————————————————- ۳۶

شکل ۲-۱———————————————————-